1. Получены результаты, указывающие на единство сигнальных путей, регулирующих развитие нервной системы у разных типов животных. Исследована роль рецепторов внеклеточного матрикса, интегринов, участвующих в реализации миогенной и нейрональной дифференцировки у млекопитающих, в формировании мышечной и нервной систем у двустворчатых моллюсков. Установлено, что один из таких рецепторов, альфаV бета3-подобный интегрин, важный для миогенной дифференцировки клеток млекопитающих, не участвует в миогенной дифференцировке клеток моллюсков, но солокализован с характерными для моллюсков нейрональными маркерами – нейромедиаторами серотонином или нейропептидом FMRFамидом.
Odintsova N.A., Maiorova M.A. Localization of alphaV beta3-like integrin in cultivated larval cells of the mussel Mytilus trossulus during neuronal and muscle differentiation //Journal of Molecular Histology. 2012. V. 43, № 4. P. 449-459.
2. Проведено сравнительное изучение криозащитного действия проникающих и непроникающих криопротекторов на сохранность клеток морских микроводорослей. Наиболее выраженное криозащитное действие оказывает проникающий через мембрану клеток этиленгликоль в комбинации с дисахаридом трегалозой. Однако, главный фактор успешного криосохранения культур микроводорослей – это скорость замораживания. Установлено, что различия в криочувствительности клеток морских микроводорослей не зависят от таксономического положения и определяются особенностями состава их клеточной стенки.
Boroda A.V., Aizdaicher N.A., Odintsova N.A. The influence of ultra-low temperature storage on marine microalgal cells // Journal of Applied Phycology. 2013. V. 26, № 1. P. 387-397; Патент России № 2496318 "Способ криосохранения морских микроводорослей". Авторы: Борода А.В., Айздайчер Н.А., Одинцова Н.А. Патентообладатели – ИБМ ДВО РАН и ДВФУ. Приоритет от 15.06.2012.
3. Впервые установлено, что активная дифференцировка пигментных клеток у морских ежей, которая происходит как результат реакции на стресс, сопровождается усиленной экспрессией генов, участвующих в биосинтезе нафтохинонов. Разработана технология направленной дифференцировки пигментных клеток эмбрионов морских ежей, способных продуцировать биоактивные вещества с терапевтическим потенциалом в условиях культуры (Совместно с БПИ ДВО РАН и ТИБОХ ДВО РАН).
Ageenko N.V., Kiselev K.V., Odintsova N.A. Expression of Pigment Cell-Specific Genes in the Ontogenesis of the Sea Urchin Strongylocentrotus intermedius // Evidence-Based Complementary and Alternative Medicine (eCAM journal). 2011. doi: 10.1155/2011/730356.
Ageenko N.V., Kiselev K.V., Dmitrenok P.S., Odintsova N.A. Pigment cell differentiation in blastula-derived primary cell cultures of sea urchins //Marine Drugs. 2014. Special issue: Advances and New Perspectives in Marine Biotechnology. V. 12. P. 3874-3891. doi: 10.3390/md12073874
Ageenko N.V., Kiselev K.V., Odintsova N.A Freezing tolerance of sea urchin embryo pigment cells // Russian J. Marine Biology. 2016. V. 42, № 5. P. 437-441.
4. Впервые проанализированы данные о структуре и роли факторов роста и их рецепторов, принадлежащих семейству VEGF и VEGFR, в развитии беспозвоночных животных, с особым акцентом на роль этих факторов в органогенезе и регенерации. Обнаружено, что экспрессия большинства генов этого семейства начинается в процессе развития на стадии гаструляции и органной дифференцировки. На основе собственных и литературных данных сделан вывод, что основная биологическая функция VEGF/VEGFR сигнального пути связана с контролем миграции клеток и развития ветвящихся органов как у позвоночных, так и беспозвоночных животных
Kipryushina Y.O., Yakovlev K.V., Kulakova M.A., Odintsova N.A. Expression pattern of Vascular endothelial growth factor-2 during sea urchin development // Gene Expression Patterns. 2013. V. 13, № 8. P. 402-406.
Kipryushina Y.O., Yakovlev K.V., Odintsova N.A. Vascular endothelial growth factors: A comparison between invertebrates and invertebrates // Сytokines and Growth Factor Reviews. 2015. V. 26, № 6. P. 687-695.
5. Проведена оценка распространенности герпес-подобного вируса в природных популяциях королевских крабов Северной Пацифики, охарактеризованы гистопатологические изменения в зараженных вирусом клетках и тканях. Впервые осуществлено заражение гемоцитов здоровых крабов герпес-подобным вирусом из замороженных тканей больных крабов. Разработанный способ искусственного заражения в условиях культуры может стать ключом для идентификации различных потенциально-опасных инфекций крабов.
Ryazanova T.V., Eliseikina M.G., Kalabekov I. M., Odintsova N.A. A herpes-like virus in king crabs: characterization and transmission under laboratory condition // Journal of Invertebrate Pathology. 2015. V. 127. P. 21–31.
Odintsova N.A., Eliseikina M.G, Ryazanova T.V. Experimental Infection of King Crab Hemocytes with a Herpes-like virus in Culture // Russian Journal of Marine Biology, 2015, v. 41 (5). P. 401-404.
6. Впервые установлены основные пути гибели клеток после криоконсервации в культуре клеток личинок морских ежей и двустворчатых моллюсков. Обнаружено, что помимо механического разрушения клеток, которое было связано с самим процессом замораживания, большинство клеток умирали в результате некроза или апоптоза. Апоптоз – не основной путь смерти для клеток этих животных после криоконсервации, но его индукция проходила в значительной части клеток сразу после оттаивания и зависела от используемого криопротектора. Развитие этого направления важно для определения механизмов криоустойчивости морских организмо.
Boroda A.V., Kipryushina Y.O., Yakovlev К.V., Odintsova N.A. The contribution of apoptosis and necrosis in freezing injury of sea urchin embryonic cells // Cryobiology. 2016. V. 73. P. 7-14;.
Оdintsova N.A., Boroda A.V., Maiorova M.A., Yakovlev K.V. The death pathways of mussel larval cells after a freeze-thaw cycle // Cryobiology, 2017. V. 77. P. 41-49.
7. В результате анализа механизмов установления внутриклеточной асимметрии, вследствие которых клетка приобретает полярность, было получено еще одно подтверждение того, что механизмы поляризации в бластомерах ежей начинают активироваться только в ходе первых дроблений эмбрионов. Выдвинуто предположение, что в клетках дрозофилы локальная трансляция консервативных белков поляризующих комплексов является частью механизма, устанавливающего и поддерживающего полярность клеток (совместно с Институтом биологии гена РАН, Россия, и Университетом Принстона, США)..
Yakovlev K.V. Localization of germ plasm-related structures during sea urchin oogenesis // Developmental Dynamics. 2016. V. 245, № 1. P. 56-66.
Barr J., Yakovlev K.V., Shidlovskii Y., Schedl P. Establishing and maintaining cell polarity with mRNA localization in Drosophila // Bioessays. 2016. V. 38, № 3. P. 244-253.
Информацию подготовил с.н.с. Борода А.В.
